Tema 8 - Pruebas para el diagnóstico en dermatología veterinaria Archivo

Clase del 06/10 M. Teresa Verde Presentación

DERMATOLOGÍA VETERINARIA – PROTOCOLO DIAGNÓSTICO

Pruebas laboratoriales en Dermatología

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1. Pruebas básicas laboratoriales

a. Cepillado de pelo y piel

• Procedimiento
  • Paciente sobre mesa con papel blanco.
  • Uso de peine de púas finas y densas.
  • Muestra colocada sobre placa de Petri.
• Observación de la muestra
  • Directa con lente de mano (pulgas, piojos).
  • Microscopio con muestra en porta + aceite (Cheyletiellas, liendres de piojos).
  • Sobre papel absorbente o algodón (sospecha de heces de pulgas).

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1.1 - Raspados cutáneos

• Material
  • Bisturí, cubre, porta, humectante, microscopio.
  • Humectantes: aceite mineral, parafina, KOH 10%.
• Indicación
  • Diagnóstico diferencial de ectoparásitos.
• Examen
  • Inmediato tras recogida (no envío de muestras).
  • Observación: Demodex, Sarcoptes, Cheyletiella.

Observación de la muestra – Demodex

• Raspado de áreas con lesiones recientes.
• Evitar zonas con costras o exudado.
• Realizar varios raspados en distintas zonas.
• Presionar el pliegue para extraer Demodex del folículo.
• Diagnóstico positivo: numerosos adultos y formas inmaduras.
• Falsos negativos en lesiones crónicas → biopsia.

Observación de la muestra – Sarcoptes

• Raspado de bordes de orejas, codos y piel con pápulas/costras.
• Parásito en túneles bajo la epidermis.
• Raspados profundos (mínimo 10).
• Diagnóstico positivo: observación de un individuo o huevo.
• Raspado negativo no excluye diagnóstico.

Observación de la muestra – Cheyletiella

• Parásito grande, superficial (“caspa andante”).
• Raspados superficiales en zonas descamadas.
• Diagnóstico positivo: observación de un adulto o huevo.

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1.2 - Impresión con cinta adhesiva transparente

• Material
  • Cinta adhesiva transparente, porta, microscopio.
• Indicaciones
  • Observación de parásitos superficiales.
  • Zonas difíciles de raspar, pequeños mamíferos.
  • Observación de Malassezia pachydermatis (si se tiñe).
  • Identificación de macro/microconidias de dermatofitos en cultivos.
  • Observación de queratinocitos y bacterias.

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1.3 - Tricografía (examen microscópico del pelo)

• Procedimiento
  • Arrancado de pelos de raíz, colocación en porta con aceite.
• Observaciones
  • Huevos de ectoparásitos adheridos (piojos, Cheyletiella).
  • Raíz: proporción bulbos anágen/telógen.
    • Bulbo anágen: redondeado, liso, brillante.
    • Bulbo telógen: afilado, rugoso.
  • Puntas: intactas o en brocha (autotraumas).
  • Tallo: defectos morfológicos (tricorrexis nodosa), esporas, hifas, huevos.
  • Gránulos anómalos de melanina (distrofias de color).
  • Manguitos foliculares.
• Ejemplos
  • Pelos infestados por M. canis → artrosporas ectotrix alrededor del pelo.
  • Pelos infestados por T. mentagrophytes → artrosporas en cadenas.

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1.4 - Identificación de dermatofitos

Cultivo micológico

• Recogida de muestra
  • Bordes de lesión, pelos, escamas (pinzas, moqueta, cepillo, lámpara Wood).
  • En gatos asintomáticos portadores → método del cepillo.
• Medios de cultivo
  • Sabouraud, DTM (cicloheximida, gentamicina, clortetraciclina, rojo fenol).
  • Metabolitos alcalinos a partir de proteínas del medio.
  • Duración: 7 días a 4 semanas.
• Colonias
  • Blancas algodonosas o harinosas.
  • Observación de macroconidias.
• Ejemplos de cultivo
  • M. canis, T. mentagrophytes, M. persicolor.

Lámpara de Wood

• Características
  • Alta correlación positiva con M. canis o Microsporum canis (gatos).
  • Luz ultravioleta 253 nm.
  • Observar paciente en sala oscura durante mínimo 3 minutos
• Positivo: fluorescencia amarillo-verdosa (metabolitos producidos por el hongo)
• Falsos positivos: Pseudomona aerugiosa, Corynebacterium, queratina y algunos jabones
• Falsos negativos: Tratamientos previos con fungicidas tópicos (povidona, captan)

• Wood +: Microsporum canis
• Wood - : No excluye diagnóstico de dermatofitosis