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Tema 8 -

Clase del 06/10 M. Teresa Verde Presentación

DERMATOLOGÍA VETERINARIA – PROTOCOLO DIAGNÓSTICO

Pruebas laboratoriales en Dermatología

1. Pruebas básicas laboratoriales

a. Cepillado de pelo y piel

  • Procedimiento
    • Paciente sobre mesa con papel blanco.
    • Uso de peine de púas finas y densas.
    • Muestra colocada sobre placa de Petri.
  • Observación de la muestra
    • Directa con lente de mano (pulgas, piojos).
    • Microscopio con muestra en porta + aceite (Cheyletiellas, liendres de piojos).
    • Sobre papel absorbente o algodón (sospecha de heces de pulgas).

1.1 - Raspados cutáneos

  • Material
    • Bisturí, cubre, porta, humectante, microscopio.
    • Humectantes: aceite mineral, parafina, KOH 10%.
  • Indicación
    • Diagnóstico diferencial de ectoparásitos.
  • Examen
    • Inmediato tras recogida (no envío de muestras).
    • Observación: Demodex, Sarcoptes, Cheyletiella.

Observación de la muestra – Demodex

  • Raspado de áreas con lesiones recientes.
  • Evitar zonas con costras o exudado.
  • Realizar varios raspados en distintas zonas.
  • Presionar pliegue para extraer Demodex del folículo.
  • Diagnóstico positivo: numerosos adultos y formas inmaduras.
  • Falsos negativos en lesiones crónicas → biopsia.

Observación de la muestra – Sarcoptes

  • Raspado de bordes de orejas, codos y piel con pápulas/costras.
  • Parásito en túneles bajo la epidermis.
  • Raspados profundos (mínimo 10).
  • Diagnóstico positivo: observación de un individuo o huevo.
  • Raspado negativo no excluye diagnóstico.

Observación de la muestra – Cheyletiella

  • Parásito grande, superficial (“caspa andante”).
  • Raspados superficiales en zonas descamadas.
  • Diagnóstico positivo: observación de un adulto o huevo.

1.2 - Impresión con cinta adhesiva transparente

  • Material
    • Cinta adhesiva transparente, porta, microscopio.
  • Indicaciones
    • Observación de parásitos superficiales.
    • Zonas difíciles de raspar, pequeños mamíferos.
    • Observación de Malassezia pachydermatis (si se tiñe).
    • Identificación de macro/microconidias de dermatofitos en cultivos.
    • Observación de queratinocitos y bacterias.

1.3 - Tricografía (examen microscópico del pelo)

  • Procedimiento
    • Arrancado de pelos de raíz, colocación en porta con aceite.
  • Observaciones
    • Huevos de ectoparásitos adheridos (piojos, Cheyletiella).
    • Raíz: proporción bulbos anágen/telógen.
      • Bulbo anágen: redondeado, liso, brillante.
      • Bulbo telógen: afilado, rugoso.
    • Puntas: intactas o en brocha (autotraumas).
    • Tallo: defectos morfológicos (tricorrexis nodosa), esporas, hifas, huevos.
    • Gránulos anómalos de melanina (distrofias de color).
    • Manguitos foliculares.
  • Ejemplos
    • Pelos infestados por M. canis → artrosporas ectotrix alrededor del pelo.
    • Pelos infestados por T. mentagrophytes → artrosporas en cadenas.

1.4 - Identificación de dermatofitos

Cultivo micológico

  • Recogida de muestra
    • Bordes de lesión, pelos, escamas (pinzas, moqueta, cepillo, lámpara Wood).
    • En gatos asintomáticos portadores → método del cepillo.
  • Medios de cultivo
    • Sabouraud, DTM (cicloheximida, gentamicina, clortetraciclina, rojo fenol).
    • Metabolitos alcalinos a partir de proteínas del medio.
    • Duración: 7 días a 4 semanas.
  • Colonias
    • Blancas algodonosas o harinosas.
    • Observación de macroconidias.
  • Ejemplos de cultivo
    • M. canis, T. mentagrophytes, M. persicolor.

Lámpara de Wood

  • Características
    • Alta correlación positiva con M. canis (gatos).
    • Luz ultravioleta 253 nm.
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